《一、前言》
一、前言
极地的生存环境极端恶劣,气候酷寒干燥,食物资源稀缺,每年长达数月的极昼极夜使得生物节律难以保持,新陈代谢被打乱。极地动物是如何在这种环境下生存?哪些基因帮助它们调节、适应极端寒冷和高盐等环境,海中鱼类如何抗冻?极地陆上动物如何保暖?这些都是极为有趣的科学问题。然而,长久以来极地以其寒冷的生存环境严重制约了生命科学领域的研究,近年来随着极地勘测和样品获取技术的飞速发展,极地动物生命科学领域的研究也取得了长足进步。揭秘极地动物,特别是渔业动物的基因组结构,发掘功能基因,探究极地动物适应寒冷环境的分子机制,不仅具有重要的科学意义,而且还有重大的应用价值和潜力。
《二、极地动物基因资源研究与应用现状》
二、极地动物基因资源研究与应用现状
《(一)极地动物基因组研究现状》
(一)极地动物基因组研究现状
1. 极地动物基因组研究处于起步阶段
据不完全统计,截至 2018 年 9 月,已进行基因组测序的动物种类有 380 余种,发表论文 385 篇(见图 1(a)),而现今只有 13 种极地动物的基因组发表在 12 篇文章上,比例不足 3%(见表 1)。当然,这与极地动物样品获取困难、基因组研究起步较晚有关。
《表 1》
表 1 已完成基因组测序的极地动物

如图 1 所示, 我们可以看到动物基因组研究始于 1998 年。以 2010 年为节点,文章发表数量呈现明显增加趋势,而在 2011 年大西洋鳕鱼才是第一个完成基因组测序的极地动物 [1](见图 1(b))。此外,极地动物资源并不像想象中的那么匮乏,尽管极地动物中哺乳动物的种类有限,但鱼类的种类可达数百种。因此,相对极地动物的多样性而言,基因组的相关研究存在明显的滞后。

《图 1》

图 1 动物基因组发表文章数量(a)和极地动物基因组发表文章数量(b)
2. 国外研究机构在极地基因组研究工作中占据主导地位
除了企鹅以及近期南极美露鳕的基因组文章由我国科学家领衔完成,其他 10 篇极地动物基因组文章的第一单位均来自国外:北极红点鲑、白鲸(加拿大 2 种)、南极蠓、北极熊(美国 2 种)、大西洋鳕鱼、大西洋鲑鱼(挪威 2 种)、革首南极鱼、扁嘴副带腭鱼、南极桡足类、小须鲸(韩国 4 种),见表 1。其中大多数是位于北美或北欧的研究机构,这与他们的地理优势以及长期以来对极地的重视密切相关。然而值得注意的是,韩国已经对革首南极鱼、扁嘴副带腭鱼、南极桡足类、小须鲸 4 个物种进行了基因组测序,成为完成极地动物基因组测序最多的国家(极地动物基因组工作的国别归属均以第一完成单位所在国家为准)。
《(二)极地动物转录组的研究进展和现状》
(二)极地动物转录组的研究进展和现状
极地动物具有独特的生物学现象和性状,如抗冻鱼的抗冻性状及其缺少血红细胞、北极露脊鲸的长寿和不患癌症等。转录组是研究基因表达的重要工具,开展转录组分析,挖掘功能基因,为产业化利用提供基因资源,具有重要意义和应用潜力。据不完全统计,人们已对 31 种极地动物进行了转录组测序,其中北极物种有 8 个、南极物种有 23 个。自 2008 年起,相关文章陆续发表;2013 年文章发表数量明显增多,2015 年达到小高峰。此类研究大多在北美和欧洲机构中展开,英美发表文章占 45%,2012 年以来,韩国的研究成果增长显著(见图 2)。

《图 2》

图 2 2008—2018 年极地动物转录组发表文章数量(a)和发表的国家统计(b)
1. 生物对环境适应性的转录组研究
极地以其极端环境引起人们对生物在极端环境下生存机理的研究兴趣。研究主要集中在低温适应、干燥胁迫、海水酸化、海洋变暖等方面。从植物(如南极嗜寒衣藻 [13])、无脊椎动物(如南极线虫 [14]、南极水蚤 [15])到鱼类(如博氏南冰鰧 [16]、南极美露鳕 [17]、独角雪冰鱼 [18]、裸身雅南极鱼 [19]),学者们对转录组进行了测序、组装,对信号通路进行分析,研究这些物种对冷环境适应的分子机理。
Cocca 等 [20] 通过 cDNA 文库等手段,发现南极冰鱼发生了血红蛋白基因的丢失,导致血液呈现纯白色;随后研究发现在其中的 6 个物种中肌红蛋白基因也跟着丢失,使得心脏等器官也呈现白色;血红蛋白基因丢失使得冰鱼对氧气的运输能力只有 10%,可通过皮肤呼吸和心脏变大弥补这种缺失 [21]。Xu 等 [22] 通过转录组分析进一步揭示冰鱼通过血红蛋白基因丢失适应低温的分子机制。
Shin 等 [23] 通过对革首南极鱼、头带冰鱼、南极多线鱼这 3 种南极鱼与生活在温带气候的鱼类的转录组比较后发现,南极鱼类的泛素结合蛋白表达量较高,而这类蛋白对寒冷环境下鱼体内蛋白保持活性状态起重要作用。
Bilyk 等 [16] 发现泛素蛋白连接酶活性和蛋白泛素化等途径相关的基因对博氏南冰鰧在寒冷环境中的生存起到了重要作用。Coppe 等 [24] 发现独角雪冰鱼在线粒体生物合成和有氧呼吸过程中,鱼体一直保持着基因复制和较高的线粒体密度,这或许是独角雪冰鱼在寒冷环境并缺乏氧运输蛋白的情况下,调节自身产能方式和效率,以适应外界环境的一种方式。
全球气候变化使人们对两极动植物的生存问题产生更多关注。海水酸化、气温升高是学者研究的热点。Clark 等 [25] 发现,在南极磷虾转录组中热激蛋白(Hsp70、Hsp90)、铁蛋白、谷胱甘肽 S 转移酶(GST)的表达量较高,可能在磷虾适应环境变化中起重要作用。Meyer 等 [26] 通过转录组测序研究了 CO2 含量变化对磷虾的影响以及磷虾对环境变化的适应性。Buckley 等 [27] 报道了环境温度升高过程中伯氏肩孔南极鱼的转录水平上的变化,发现热激蛋白表达量并未有差异,而其他与细胞应激反应相关的基因表达量上调,说明在全球变暖下伯氏肩孔南极鱼对环境的适应性较差。Huth 等 [28]则报道了伯氏肩孔南极鱼在海水酸化和气温升高的胁迫下,参与代谢转移、DNA 损伤修复、免疫系统、细胞凋亡通路的活跃性、细胞分化调控等途径的基因表达量均较高。
2. 生物对污染物应激反应的转录组研究
Andersen 等 [29] 研究表明,原油污染会造成成纤维细胞生长因子基因(FGF7)的表达量大幅上调,对胆汁富集毒素鱼体的肝脏保护起到重要作用,因此 FGF7 可作为生物体内监控原油泄漏的标志。Kang 等 [30] 对污染物处理的南极隐须钩虾进行了转录组测序,筛选到 658 个基因可作为潜在的多氯化联苯污染标志基因、168 个基因为潜在的全氟辛烷磺酸污染标志基因、367 个基因为全氟辛酸污染标志基因。Rhee 等 [31] 以北极绿海胆为材料,研究了多氯联苯对生物体的影响。发现在使用多氯联苯处理北极绿海胆 48 h 后,其 11 个基因的表达量大幅上调,因此这些基因或许可以作为标志物,用于环境中多氯联苯的检测和环境毒理学研究。
3. 生物发育阶段或不同组织的转录组分析
极地生物的生长发育也是学者们关注的重点。 自 Pitta 等 [32] 于 2008 年首次报道了磷虾不同组织的转录组数据后,Seear 等 [33] 筛选出磷虾蜕壳过程中的 26 个差异表达基因,分别参与几丁质合成、分化和吸收。海蛇尾的断肢可以再生,而南极海蛇尾的断肢再生速度是最慢的。Burns 等 [34] 通过对南极海蛇尾转录组的分析,发现 Wnt/β–catenin 信号通路、同源盒基因(Hox)及 SRY 盒–SOX 基因家族、TGF–β 信号转导通路可能在其断肢再生过程中发挥重要作用。Gudbrandsson 等 [35] 对不同群体的北极红点鲑的四个胚胎发育阶段进行转录组分析,发现若干生物途径的基因在胚胎发育过程中的表达量有差异,而能量代谢和血液凝结相关基因在不同群体的鲑鱼中差异表达;单核苷酸多态性(SNP)频率分析表明,不同群体的鲑鱼之间存在大范围遗传分化。Magnanou 等 [36] 对北极红点鲑不同组织的转录组进行测序,分析了神经内分泌、代谢、行为等关键生物学途径。
4. 极地动物功能基因的研究现状
通过同源克隆、基因组和转录组测序,获得一些极地动物的功能基因。据不完全统计,涉及到30 多个物种,其中 20 多个是鱼类;同时涉及 20 多个生命过程或功能(见表 2)[37~50]。
《表 2》
表 2 已研究的功能基因(不完全统计)

极地地区的一些鱼类具有合成抗冻蛋白的能力,以适应极地的低温生活条件。在断线真狼绵鳚基因中,共发现抗冻蛋白 III 型有 7 个不同的变体,翻译成 5 个不同的蛋白亚型;亚型的分化是正向选择的结果,说明抗冻蛋白的多样性对生物体抗低温有重要作用 [37]。南极多线鱼和南极鳕鱼中的抗冻蛋白 IV 型基因序列相似度达 94%,进化分析显示这个基因在硬骨鱼中广泛存在,并且内含子区域高度保守。两个重组蛋白中均结出星型冰晶,且冰晶的温度在 0.08 ℃,证明了重组蛋白具有抗冻活性。
热休克蛋白(HSPs)是一类广泛存在的热应激蛋白,当生物体处于高温暴露时,就会由热激发合成此种蛋白,以保护自身。在 10 ℃的环境下,南极帽贝 HSP70 表达量可以显著增高,表明 HSP70在南极帽贝调节适应环境温度的过程中起到了重要作用 [44]。在伯氏肩孔南极鱼、博氏南冰鰧、断线真狼绵鳚这 3 种南极鱼中,HSC71 和 HSP70 的表达量随低温处理时间增加而变化。研究表明,在低温环境下,蛋白会发生冷变性或折叠错误,导致分子伴侣热击蛋白的表达量升高,从而帮助生物体在低温环境下生存 [45]。
《三、问题与挑战》
三、问题与挑战
《(一)极地动物基因组解析工作处于起步阶段》
(一)极地动物基因组解析工作处于起步阶段
受限于样品的获取技术,目前只有 13 种极地动物完成了全基因组测序,占已进行基因组测序并发表文章的动物种类(380 余种)的 3%。相比而言,极地动物基因组测序开展的规模小、种类少,这与极地相对丰富的动物资源相比远远不够。而且已测序的极地动物中也主要以鱼类为主(6 种),还有许多极地动物(如大西洋庸鲽、南极磷虾)的基因组图谱尚未见报道。因此,极地动物基因组研究有着极大的发展潜力。
《(二)极地动物转录组测序缺乏系统性》
(二)极地动物转录组测序缺乏系统性
据不完全统计,进行转录组测序的极地动物达31 种,但由于样品获取和保存技术等因素的限制,转录组方面的研究比较零散,难以系统支撑极地生物特殊性状的遗传解析工作。因此,对同一物种的样品采集进行细化以及对其他极地物种展开批量化转录组研究,是规模化发掘极地动物基因资源的关键,也是进行极地动物特殊性状解析的基础。
《(三)功能基因的研究不够深入》
(三)功能基因的研究不够深入
目前在多种极地动物中初步开展了一些功能基因的研究,但研究手段较单一,主要以描述性分析为主(如克隆基因序列、表达模式分析等),加之模拟极地生存环境难度较大,很难开发出极地模式生物进行研究,也没有相应细胞系等研究材料。这导致在极地动物中缺乏相应的基因功能分析平台,难以对基因功能进行验证和深入研究。
《(四)极地动物表观遗传研究有待开展》
(四)极地动物表观遗传研究有待开展
表观遗传在动物适应外界环境和温度变化中起着重要作用,而极地的寒冷气候对极地动物表型影响的表观遗传调控机制研究目前尚未见报道,亟待开展。
《(五)极地动物基因应用很少》
(五)极地动物基因应用很少
由于极地动物基因在获取、鉴定和功能分析方面的限制,加上缺少极地动物基因工程产品的研制,迄今极地动物功能基因的应用还很薄弱,基因工程产品亟待研发。
《四、 极地动物基因资源发掘与应用研究的技术需求》
四、 极地动物基因资源发掘与应用研究的技术需求
《(一)系统开展极地动物组学研究,针对极地渔业生物特殊性状展开遗传解析》
(一)系统开展极地动物组学研究,针对极地渔业生物特殊性状展开遗传解析
系统开展极地动物组学研究,研发极地动物样品获取和保存技术。加大以极地渔业动物为主的基因组测序研究,有针对性地选取对极端环境适应等具有特殊意义的极地动物展开组学研究,为开展极地动物适应性机制和全球环境变化影响等研究提供理论依据。
《(二)构建极地动物基因功能研究平台,对特有基因功能进行深入研究》
(二)构建极地动物基因功能研究平台,对特有基因功能进行深入研究
进行极地动物特殊性状的遗传解析,筛选关键的功能基因,建立极地动物细胞系,探索极地动物的实验室养殖技术,开发极地渔业模式动物,为极地渔业动物基因功能验证分析提供技术保障。
《(三)开展极地动物适应极地生存环境的机制解析》
(三)开展极地动物适应极地生存环境的机制解析
极地动物特殊的适应性为研究环境与基因互作最终形成特定表型提供了理想材料。在极地动物中开展表观遗传学研究,有助于分析极地极寒环境对极地动物基因表达的调控机制。极地鱼类一般生长代谢缓慢、生命周期长,但是也有一些鱼类生长速度不亚于常温下的鱼类。例如大西洋庸鲽,作为冷水性鱼类,耐低温能力强,生长速度快,2 年内可从 0.25 kg 长到 2.5 kg。对大西洋庸鲽的全基因组测序和精细图谱绘制,有助于解析大西洋庸鲽生长代谢的分子机制,可为其他鲆鲽鱼类和海水鱼类的养殖提供创新思路和基因资源。
《(四)加强极地动物基因工程产品研发和应用研究》
(四)加强极地动物基因工程产品研发和应用研究
基因组研究的最终目的就是开发出能够应用的基因,研制基因工程产品。以抗冻蛋白为例,已广泛应用于食品添加剂、作物抗寒等领域,但现在的主要来源是提取天然抗冻蛋白,产量受到极大限制;而通过基因工程技术则可以规模化生产抗冻蛋白,实现抗冻蛋白在细胞和组织冷冻保存、食品、医药、化妆品等领域的产业化应用。此外,开展南极鱼类低温酶基因工程产品的研发,开发其作为洗衣粉添加剂、消毒剂的应用途径也基因组研究的最终目的就是开发出能够应用的基因,研制基因工程产品。以抗冻蛋白为例,已广泛应用于食品添加剂、作物抗寒等领域,但现在的主要来源是提取天然抗冻蛋白,产量受到极大限制;而通过基因工程技术则可以规模化生产抗冻蛋白,实现抗冻蛋白在细胞和组织冷冻保存、食品、医药、化妆品等领域的产业化应用。此外,开展南极鱼类低温酶基因工程产品的研发,开发其作为洗衣粉添加剂、消毒剂的应用途径也具有重要意义和应用前景。
《五、对策建议》
五、对策建议
《(一)发展目标(2025 年和 2035 年)》
(一)发展目标(2025 年和 2035 年)
到 2025 年,完成 5~10 种极地鱼类和南极磷虾等重要极地渔业生物的全基因组测序,揭示重要极地渔业动物适应特殊生存环境的分子机制;在模式鱼类或鱼类细胞系中通过基因编辑技术对极地鱼类候选基因的功能进行验证;探索适于极地动物暂养的实验室条件,为建立极地动物功能验证平台提供支撑。
到 2035 年,建立较为完善的极地动物基因资源发掘平台,完成 20 种以上极地渔业动物基因组解析;完成 3~5 个极地渔业动物特殊性状的遗传解析计划,鉴定一批在极地生存环境适应过程中的关键基因;完善极地动物细胞系建立技术;实现极地动物的实验室暂养和长期培养,应用于功能基因的深入研究;挑选合适的候选基因,研发 1~2 种极地渔业动物的基因工程产品,进行成果转化和产业应用。
《(二)重点任务》
(二)重点任务
1. 极地渔业动物特殊性状的遗传解析
加强对极地重要渔业动物基因组和转录组研究,增加测序的物种种类,有针对性地对特殊性状展开遗传解析;开展极地渔业动物表观遗传学及其调控动物适应寒冷机制的研究;作为对生态系统和产物资源都具有战略意义的物种,南极磷虾和大西洋庸鲽等极地渔业动物基因组的精细图谱值得开展系统、细致的绘制。
2. 极地动物特有基因的功能验证
深入挖掘和分析极地动物的基因组和转录组,筛选极地动物特有基因(或进化出特殊功能的基因);在模式鱼类或鱼类细胞系中,利用基因编辑技术、过表达技术、转基因技术,对基因功能进行验证和研究;探索极地动物的实验室培养条件,建立极地动物基因功能研究平台。
3. 极地渔业动物基因工程产品的研发和应用
在极地动物抗寒、抗病、抗癌、快速生长、长寿等方面,针对已验证功能的基因,通过基因工程技术获得抗冻蛋白、低温酶、快速生长等基因工程产物,探索其在食品、医药、日用、水产养殖等领域的应用潜力,实现基因资源的成果转化和利用,为这些领域实现增值提效提供基因资源和产品。
《(三)重大科技工程建议》
(三)重大科技工程建议
建议设立极地渔业生物基因资源发掘与应用的国家重点研发计划专项,重点支持如下方向:①极地鱼类和南极磷虾等极地重要渔业动物全基因组测序及精细图谱绘制;②极地渔业动物特殊性状的遗传解析;③极地渔业动物细胞培养与细胞系建立;④极地渔业动物基因工程产品研发与应用。
参考文献
[1] Star B, Nederbragt A J, Jentoft S, et al. The genome sequence of Atlantic cod reveals a unique immune system [J]. Nature, 2011, 477(7363): 207–210.
链接1
[2] Miller W, Schuster S C, Welch A J,et al. Polar and brown bear genomes reveal ancient admixture and demographic footprints of past climate change [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2012, 109(36): E2382– 2390.
链接1
[3] Shin S C, Ahn D H, Kim S J C, et al. The genome sequence of the Antarctic bullhead notothen reveals evolutionary adaptations to a cold environment [J]. Genome Biololgy, 2014, 15(9): 468.
链接1
[4] Yim H S, Cho Y S, Guang X, et al, Minke whale genome and aquatic adaptation in cetaceans [J]. Nature Genetics, 2014, 46(1): 88–92.
链接1
[5] Kelley J L, Peyton J T, Fiston-Lavier A S, et al, Compact genome of the Antarctic midge is likely an adaptation to an extreme environment [J]. Nature Communications, 2014, 5: 4611.
链接1
[6] Li C, Zhang Y, Li J, et al. Two Antarctic penguin genomes reveal insights into their evolutionary history and molecular changes related to the Antarctic environment [J]. GigaScience, 2014, 3(1): 27.
链接1
[7] Lien S, Koop B F, Sandve S R, et al. The Atlantic salmon genome provides insights into rediploidization [J]. Nature, 2016, 533(7602): 200–205.
链接1
[8] Ahn D H, Shin S C, Kim B M, et al. Draft genome of the Antarctic dragonfish, Parachaenichthys charcoti [J]. GigaScience, 2017, 6(8): 1–6.
链接1
[9] Jones S J M, Taylor G A, Chan S, et al. The genome of the Beluga whale (Delphinapterus leucas) [J]. Genes (Basel), 2017, 8(12): Pii:E378.
链接1
[10] Kang S, Ahn D H, Lee J H, et al, The genome of the Antarctic-endemic copepod, Tigriopus kingsejongensis [J]. GigaScience, 2017, 6(1): 1–9.
链接1
[11] Christensen K A, Rondeau E B, Minkley D R, et al. The Arctic charr (Salvelinus alpinus) genome and transcriptome assembly [J]. Plos One, 2018, 13(9): e0204076.
链接1
[12] Chen L B , Lu Y, Li W H, et al. The genomic basis for colonizing the freezing Southern Ocean revealed by Antarctic toothfish and Patagonian robalo genomes [J]. GigaScience, 2019, 8: 1–16
链接1
[13] Liu C L, Huang X H. Transcriptome-wide analysis of DEADbox RNA helicase gene family in an Antarctic psychrophilic alga Chlamydomonas sp ICE-L [J]. Extremophiles, 2015, 19(5): 921–931.
链接1
[14] Thorne M A S, Kagoshima H, Clark M S, et al. Molecular analysis of the Cold Tolerant Antarctic Nematode, Panagrolaimus davidi [J]. Plos One, 2014, 9(8): e104526.
链接1
[15] Kim H S, Lee B Y, Han J, et al. De novo assembly and annotation of the Antarctic copepod (Tigriopus kingsejongensis) transcriptome [J]. Marine Genomics, 2016, 28: 37.
链接1
[16] Bilyk K T, Cheng C H C. Model of gene expression in extreme cold-reference transcriptome for the high-Antarctic cryopelagic notothenioid fish Pagothenia borchgrevinki [J]. BMC Genomics, 2013, 14: 634.
链接1
[17] Chen Z, Cheng C H C, Zhang J, et al. Transcriptomic and genomic evolution under constant cold in Antarctic notothenioid fish [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2008, 105(35): 12944.
链接1
[18] Coppe A, Agostini C, Marino I A M, et al. Genome evolution in the cold: Antarctic icefish muscle transcriptome reveals selective duplications increasing mitochondrial function [J]. Genome Biology and Evolution, 2012, 5 (1): 45.
链接1
[19] Papetti C, Harms L, Windisch H S, et al. A first insight into the spleen transcriptome of the notothenioid fish Lepidonotothen nudifrons: Resource description and functional overview [J]. Marine Genomics, 2015, 24: 237.
链接1
[20] Cocca E, Ratnayake-lecamwasam M, Parker S K, et al. Genomic remnants of alpha-globin genes in the hemoglobinless antarctic icefishes [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1995, 92: 1817–1821.
链接1
[21] O’Brien K M, Mueller I A. The unique mitochondrial form and function of Antarctic channichthyid icefishes [J]. Integrative and Comparative Biology, 2010, 50: 993–1008.
链接1
[22] Xu Q, Cai C, Hu X, et al. Evolutionary suppression of erythropoiesis via the modulation of TGF-β signalling in an Antarctic icefish [J]. Molecular Ecology, 2015, 24: 4664–4678.
链接1
[23] Shin S C, Kim S J, Lee J K, et al. Transcriptomics and comparative analysis of three Antarctic notothenioid fishes [J]. Plos One, 2012, 7(8): e43762.
链接1
[24] Coppe A, Agostini C, Marino I A, et al. Genome evolution in the cold: Antarctic icefish muscle transcriptome reveals selective duplications increasing mitochondrial function [J]. Genome Biology and Evolution, 2013, 5: 45–60.
链接1
[25] Clark M S, Thorne M A S, Toullec J Y, et al. Antarctic krill 454 pyrosequencing reveals chaperone and stress transcriptome [J]. Plos One, 2011, 6(1): e15919.
链接1
[26] Meyer B, Martini P, Biscontin A, et al. Pyrosequencing and de novo assembly of Antarctic krill (Euphausia superba) transcriptome to study the adaptability of krill to climate-induced environmental changes [J]. Molecular Ecology Resource, 2015, 15: 6.
链接1
[27] Buckley B A, Somero G N. cDNA microarray analysis reveals the capacity of the cold-adapted Antarctic fish Trematomus bernacchii to alter gene expression in response to heat stress [J]. Polar Biology, 2009, 32 (3): 403.
链接1
[28] Huth T J, Place S P. Transcriptome wide analyses reveal a sustained cellular stress response in the gill tissue of Trematomus bernacchii after acclimation to multiple stressors [J]. BMC Genomics, 2016, 17: 127.
链接1
[29] Andersen Ø, Frantzen M, Rosland M, et al. Effects of crude oil exposure and elevated temperature on the liver transcriptome of polar cod (Boreogadus saida) [J]. Aquatic Toxicology, 2015, 165: 9.
链接1
[30] Kang S, Kim S, Park H. Transcriptome of the Antarctic amphipod Gondogeneia antarctica and its response to pollutant exposure [J]. Marine Genomics, 2015, 24: 253.
链接1
[31] Rhee J S R, Kim B M, Choi B S, et al. Transcriptome information of the Arctic green sea urchin and its use in environmental monitoring [J]. Polar Biology, 2014, 37 (8): 1133.
链接1
[32] De Pittà C, Bertolucci C, Mazzotta G M, et al. Systematic sequencing of mRNA from the Antarctic krill (Euphausia superba) and first tissue specific transcriptional signature [J]. BMC Genomics, 2008, 9: 45.
链接1
[33] Seear P J, Tarling G A, Burns G, et al. Differential gene expression during the moult cycle of Antarctic krill (Euphausia superba) [J]. BMC Genomics, 2010, 11: 582.
链接1
[34] Burns G, Thorndyke M C, Peck L S, et al. Transcriptome pyrosequencing of the Antarctic brittle star Ophionotus victoriae [J]. Marine Genomics, 2013, 9: 9.
链接1
[35] Gudbrandsson J, Ahi E P, Franzdottir S R, et al. The developmental transcriptome of contrasting Arctic charr (Salvelinus alpinus) morphs [J]. F1000Research, 2015, 4: 136.
链接1
[36] Magnanou E, Noirot C, Falcón J, et al. Sequencing and characterization of a multi-organ Arctic charr transcriptome: A toolbox for investigating polymorphism and seasonal life in a high Arctic fish [J]. Marine Genomics, 2016, 29: 45.
链接1
[37] Kelley J L, Aagaard J E, MacCoss M J, et al. Functional diversification and evolution of antifreeze proteins in the antarctic fish Lycodichthys dearborni [J]. Journal of Molecular Evolution, 2010, 71: 111–118.
链接1
[38] Nicodemus-Johnson J, Silic S, Ghigliotti L, et al. Assembly of the antifreeze glycoprotein/trypsinogen-like protease genomic locus in the Antarctic toothfish Dissostichus mawsoni (Norman) [J]. Genomics, 2011, 98(3): 194–201.
链接1
[39] Lee J K, Kim Y J, Park K S, et al. Molecular and comparative analyses of type IV antifreeze proteins (AFPIVs) from two Antarctic fishes, Pleuragramma antarcticum and Notothenia coriiceps [J]. Comparative Biochemistry and Physiology B-Biochemisty & Molecular Biology, 2011, 159(4): 197–205.
链接1
[40] Cao L X, Huang Q, Wu Z C, et al. Neofunctionalization of zona pellucida proteins enhances freeze-prevention in the eggs of Antarctic notothenioids [J]. Nature Communications, 2016, 7(1): 12987.
链接1
[41] Oreste U, Coscia M. Specific features of immunoglobulin VH genes of the Antarctic teleost Trematomus bernacchii [J]. Gene, 2002, 295(2): 199–204.
链接1
[42] Capriglione T, Odierna G, Caputo V, et al. Characterization of a Tc1-like transposon in the Antarctic ice-fish, Chionodraco hamatus [J]. Gene, 2002, 295(2): 193–198.
链接1
[43] Small D J, Moylan T, Vayda M E, et al. The myoglobin gene of the Antarctic icefish, Chaenocephalus aceratus, contains a duplicated TATAAAA sequence that interferes with transcription [J]. Journal of Experimental Biology, 2003, 206: 131–139.
链接1
[44] Kim M, Ahn I Y, Kim H J, et al. Molecular characterization and induction of heat shock protein 90 in the Antarctic bivalve Laternula elliptica [J]. Cell Stress & Chaperons, 2009, 14(4): 363–370.
链接1
[45] Place S P, Hofmann G E. Constitutive expression of a stressinducible heat shock protein gene, HSP70, in phylogenetically distant Antarctic fish [J]. Polar Biology, 2005, 28(4): 261–267.
链接1
[46] Clark M S, Fraser K P P, Burns G, et al. The HSP70 heat shock response in the Antarctic fish Harpagifer antarcticus [J]. Polar Biology, 2008, 31(2): 171–180.
链接1
[47] Ahi E P, Steinhäuser S S, Pálsson A, et al. Differential expression of the aryl hydrocarbon receptor pathway associates with craniofacial polymorphism in sympatric Arctic charr [J]. EvoDevo, 2015, 6: 27.
链接1
[48] Aluru N, Jorgensen E H, Maule A G, et al. PCB disruption of the hypothalamus-pituitary-interrenal axis involves brain glucocorticoid receptor downregulation in anadromous Arctic charr [J]. American Journal of Physiology-Regulatory Integrative and Comparative Physiology, 2004, 287(4): R787–793.
链接1
[49] Miyazaki T, Iwami T. Molecular cloning of cDNA encoding red opsin gene in the retinas of five Antarctic notothenioid fishes [J]. Polar Biology, 2012, 35(5): 775–783.
链接1
[50] Borley K A, Sidell B D. Evolution of the myoglobin gene in Antarctic icefishes (Channichthyidae) [J]. Polar Biology, 2011, 34(5): 659–665.
链接1