《1 前言》

1 前言

超滤是近三十年来崛起的膜分离技术,广泛应用于大分子组成与小分子物质的分离,包括水处理、化工、医药及食品等工业[1~3] 。聚醚砜(PES)具有良好的热力学、化学稳定性以及力学性能,已经成为常用的商业超滤膜材料之一。但是 PES 由于自身疏水性的缺点,在应用中易受膜生物污染,进而导致原液渗透速率降低、通量下降等一系列问题,最终降低膜的效率和使用寿命,限制了PES作为商业膜的应用前景[4~6] 。膜生物污染主要由于细菌粘附在膜表面进而生长繁殖并分泌产物,最终形成一层致密的生物膜。制备具有抗菌性能的膜,可阻止细菌等微生物在膜表面形成生物膜并杀死细菌,在一定程度上抑制膜生物污染[7,8] 。制备抗菌超滤膜主要通过膜表面改性和共混改性。其中,共混改性简单易行,在保证膜机械性能和化学稳定性的基础上,以抗菌材料作为添加组分制备共混膜,赋予膜一定的抗菌性能,能够减缓膜生物污染[9~12] 。因此,膜共混改性有效扩大了超滤膜的适用范围,是制备抗菌超滤膜的有效方法之一。酶是具有生物催化功能的生物大分子,具有催化高效性、选择性强、反应条件温和等特性,相对其他多数抗菌剂,酶可以被微生物分解,且产物大多无毒,符合绿色化学的要求。其中,溶菌酶抗菌谱较广,对革兰氏阳性菌如枯草菌、金黄色葡萄球菌、大肠杆菌等具有较好的抗菌效果。溶菌酶安全性很高,特异性强,在食品、生物工程以及畜牧业中应用广泛[12~15] 。氧化石墨烯(GO)是石墨烯氧化物的片层结构,含有大量易改性含氧官能团[16,17] 。GO 可以通过 GO 片层与其他分子之间的π-π 堆积力、范德华力以及氢键等非共价键进行结合[18] 。本文以GO作为固定溶菌酶的载体材料,通过静电作用将溶菌酶固定在GO表面,并以PES作为膜材料,通过共混改性的方法制备抗菌超滤膜。

《2 实验部分》

2 实验部分

《2.1 试剂与仪器》

2.1 试剂与仪器

天然石墨粉(粒径约为 45 μm),青岛兴和石墨有限公司;PES,工业品,BASF公司;异硫氰酸荧光素(FITC),95 %,溶菌酶,生化试剂,百灵威化学试剂有限公司;聚乙二醇(PEG 20 000),分析纯,上海化学试剂厂;聚乙烯吡咯烷酮(PVP),N,N-二甲基乙酰胺(DMAc),分析纯,天津市科密欧化学试剂有限公司;聚乙烯醇(PVA 30 000~70 000),分析纯, ACROS ORGANICS,美国。其他试剂均为分析纯。

美国 FEI 公司 TECNAI G2 型透射电子显微镜(TEM);杭州赛菲膜分离技术有限公司SF-SB型膜性能评价仪,测试条件为 0.2 MPa;日本岛津公司 UV-2450 型紫外-可见分光光度计(UV-Vis);日本 JEOL 公司 JSM-6700F 型扫描电子显微镜(SEM),测试电压为 25 kV;接触角测定仪(OCA20),德国 Dataphysics公司;万能材料试验机,AG-10-TB,日本津岛公司;落射荧光显微镜(BM-21AY),上海彼爱姆光学仪器制造有限公司。

《2.2 GO的制备》

2.2 GO的制备

取 4.5 g 石墨粉末加入烧瓶中,添加体积比为 9∶1 的浓 H2SO4/H3PO4混合液,在磁力搅拌条件下缓慢加入 25 g 高锰酸钾,油浴温度 50 ℃下搅拌 24 h。反应结束后自然冷却,加入1 000 mL碎冰,搅拌中加入 30 % H2O2直至混合物变为金黄色,超声 2~3 h。通过超声降解法将其剥离成GO片层;将剥离后的混合液低速离心去沉淀,再高速离心。下层沉淀用30 %盐酸洗涤并磁力搅拌12 h,离心并用无水甲醇离心洗涤3遍,真空干燥24 h。

《2.3 GO固定溶菌酶》

2.3 GO固定溶菌酶

GO表面含有大量含氧官能团,当4<pH<11,水溶液中GO纳米片层带负电荷。溶菌酶(等电点≈ 10.8)在 pH 低于 11 时带正电荷,在 pH 高于 11 时带负电荷。因此,在4<pH<11的溶液中,GO与溶菌酶之间通过静电吸引,使溶菌酶固定吸附在GO表面。

具体实验步骤如下:取 50 mg 上文制备的 GO 加入100 mL磷酸盐缓冲液中(0.2 mol/L、pH=6.2),室温条件下超声分散30 min;取180 mg溶菌酶加入上述缓冲液中,在4 ℃冰水浴中磁力搅拌1 h;反应结束后,离心,收集上清液测定酶固定量;将沉淀用同种缓冲液多次洗涤以除去物理吸附的溶菌酶,将最终产物真空冷冻干燥后置于4 ℃环境中保存,即获得固定化溶菌酶(GO-Ly)。

《2.4 抗菌超滤膜的制备》

2.4 抗菌超滤膜的制备

如图 1 所示,将一定量的 GO-Ly 超声分散于 DMAc 中,随后将一定量的 PES、丙酮、PVP 加入到 DMAc溶剂中,在室温下机械搅拌至少15 h,制备出透明的均相铸膜液;过滤,真空脱泡;然后在干净的玻璃板上用刮刀刮出厚度约为0.1 mm的初生态膜,随后放入40 ℃去离子水中相转化成膜。

配制铸膜液(100 g)的组分及含量分别为:PES 18 g,PVP 8 g(致孔剂),DMAc 73.2 g 以及丙酮 0.8 g。铸膜液中 GO-Ly 的添加量为 PES 质量的 0 %、0.5 %、1.0 %、1.5 %。以GO-Ly添加量为0 %时制备的超滤膜作为空白对照组。

《图1》

图1 抗菌超滤膜制备过程示意图

Fig. 1 The process scheme of preparation of antibacterial ultrafiltration membrane

《2.5 膜的分离性能、机械性能和抗菌性能表征》

2.5 膜的分离性能、机械性能和抗菌性能表征

评价 PES 超滤膜分离性能的重要指标是纯水通量和截留率。本文采用膜性能评价仪测定超滤膜的纯水通量 J 和对两种溶质(PEG 20 000 和 PVA 30 000~70 000,初始浓度均为 0.5 g/L)的截留率 R。用 UV-Vis 测量透过液的浓度。纯水通量 J 和截留率R通过式(1)和式(2)计算。

式(1)中,为纯水通量,L/(m2 ⋅ h);A为有效膜面积, m2 ,本文中A为0.222 3 m2 ;Δ为透过时间,h;V为Δt 时间内通过膜的透过液的体积,L。

式(2)中,为截留率,%;Cp 为透过液的浓度,mg/L;Cf 为原料液中的浓度,mg/L;CpCf 的值均由UV-Vis测得。

为判定抗菌剂的加入对超滤膜弹性拉伸力和断裂伸长率的影响,本文采用 AG-10-TB 万能材料试验机测试超滤膜。测定前,将样品膜裁剪成 50 mm×25 mm(长×宽)大小,对样品条以拉伸速度 10 mm/min 进行拉伸测试。每个样品膜测定 3 次,实验结果取平均值。

实验中选择大肠杆菌(E. coli)为实验对象。实验用到的仪器均经灭菌处理,并在无菌操作台完成实验。制备106 数量级的大肠杆菌菌液备用。将各种膜剪碎后称取0.06 g于试管中(用空白膜作为对照),每个试管中加入5 mL 106 数量级的大肠杆菌菌液,置于37 ℃、250 r/min的摇床中培养4 h。培养后取出试管摇匀,吸取0.5 mL菌液于4.5 mL的无菌水中稀释,该试管中的菌浓度为培养后浓度的10-1 ,并按此稀释,得到的稀释浓度依次是10-2 、10-3 、10-4 和 10-5 。取10-5 浓度的稀释液0.1 mL于平板上,涂布均匀(此步骤做两个平行实验)。将平板倒置于37 ℃恒温培养箱中,培养 12 h 后观察结果,采集图像并对菌落计数,按式(3)计算抑菌率(BR

式(3)中,为对照组最终培养出的菌落数,cfu;为实验组最终培养出的菌落数,cfu。

《3 结果与讨论》

3 结果与讨论

《3.1 GO及GO-Ly的表征》

3.1 GO及GO-Ly的表征

图2a为GO的TEM图像,从图中可以看出,所制备的GO为纳米片层结构,并且呈现带有褶皱的薄纱形貌,表现出了GO的典型特征。为进一步观察固定溶菌酶后的 GO 形貌变化,本研究对 GO-Ly 做了TEM分析,如图2b所示,GO片层堆积,不再是良好的单层纳米片薄纱状结构,褶皱更加明显,表明溶菌酶成功固定在GO表层。

《图2》

图2 GO和GO-Ly的TEM图

Fig. 2 TEM images of GO and GO-Ly

《3.2 GO-Ly荧光分析》

3.2 GO-Ly荧光分析

本文利用具有荧光特性的FITC标记溶菌酶,观察标记后的溶菌酶(FITC-溶菌酶)固定于 GO 的荧光图片,结果如图 3 所示。图 3 所示为以静电吸附方式得到的GO-Ly。在激发波长为490 nm条件下,荧光显微镜中可观察到明亮的黄绿色荧光。图3中明显充满明亮的荧光,这表明溶菌酶通过静电吸附能成功固定到GO表面。

《图3》

图3 GO-Ly的荧光显微照片

Fig. 3 Fluorescence microscopic image of GO-Ly

《3.3 抗菌超滤膜的性能研究》

3.3 抗菌超滤膜的性能研究

3.3.1 膜上表面及断面形貌

为研究GO-Ly的添加对膜形态的影响,图4a为超滤膜上表面的SEM图像,可以看出空白膜表面粗糙平整。图 4b 为杂化膜的上表面,可以看出,与 GO-Ly共混后的杂化膜表面更加平整,粗糙程度降低,这从另一个角度说明了杂化膜的亲水性高于空白膜,这一结果与亲水性能测试结果一致。图4c和图4d分别为空白膜和杂化膜的断面形貌,由图可知 GO-Ly的加入并未改变膜的指状孔结构,但杂化膜的致密皮层厚度变厚,这可能是由于GO-Ly的加入增加了铸膜液的黏度,延长了相分离时间所导致的。另外,杂化膜皮层较空白膜稀疏,膜孔密度增大;指状孔壁是较稀疏的海绵结构,指状孔增多,孔径增大,上下贯通性良好。

《图4》

图4 空白膜和杂化膜的上表面与断面的SEM图像

Fig. 4 SEM images of supine surface and cross-section of bare membrane and hybrid membrane

3.3.2 膜的亲水性能

通过比较空白膜与杂化膜的接触角,研究不同 GO-Ly添加量对杂化超滤膜表面亲水性能的影响,如图5所示。从图5中可以看出,不含GO-Ly的PES 膜具有较大的接触角(82°),显示出较高的疏水性能。随着GO-Ly添加量的增加,膜的接触角持续降低,当添加量为1.5 %(质量分数)时,接触角低至66°,说明杂化膜亲水性随着 GO-Ly 添加量的增加不断升高。这主要是由于GO富含大量亲水性基团,另外 GO的比表面积相当大(2 600 m2 /g),溶菌酶分子在其表面的结合位点由GO边缘大量的羧基以及基面上随意分布的羟基和环氧基提供。GO固定溶菌酶后仍然有相当大的面积暴露在外,具有亲水性。在相转化过程中,随着铸膜液中 GO-Ly 含量增加,具有亲水性能的GO-Ly向膜表面移动以减少表面能,从而提高了共混膜表面的亲水性。

《图5》

图5 添加剂GO-Ly含量对膜接触角的影响

Fig. 5 The effect of GO-Ly content on contact angle of hybrid membrane

3.3.3 分离性能

图6显示了不同含量的GO-Ly对杂化膜分离性能的影响。由图6可知,在0.1 MPa下,不含GO-Ly 的空白膜的纯水通量仅为 198.5 L/(m2 ⋅ h)。随着 GO-Ly 含量的增加,杂化膜的纯水通量显著提高,当含量仅为1.5 %(质量分数)时,杂化膜的纯水通量增至 318 L/(m2 ⋅ h),与空白膜相比,通量提高了 60.2 %。另外,随着GO-Ly含量的增加,纯水通量增加的趋势变缓,开始阶段主要由于添加剂的亲水性使得纯水通量明显增加,但是随着含量的增加,一方面由于GO-Ly本身疏水,另一方面由于含量增加导致团聚概率大大增加,而GO片层不能透水,使得膜的有效透过面积降低,进而影响了杂化膜的透过性能。图 6 也显示了当 GO-Ly 含量分别为 0.5 %、 1.0 %和1.5 %(质量分数)时杂化膜对PEG 20 000和 PVA 30 000~70 000 截留率的变化。随着 GO-Ly 含量的增加,杂化膜对 PEG 20 000 的截留率降低,介于73 %~87 %,而对PVA 30 000~70 000具有良好的截留效果。这可能是由于GO-Ly发生局部团聚,加入到铸膜液中后,可能造成杂化膜的孔径增大,孔密度增加,表现为纯水通量增大,对 PEG 20 000 的截留率下降。

《图6》

图6 不同含量GO-Ly对杂化膜的纯水通量及截留率的影响

Fig. 6 The effect of GO-Ly content on water flux and rejection of hybrid membrane

3.3.4 膜的力学性能

通过测定杂化膜的拉伸强度和断裂伸长率考察GO-Ly添加量对膜的机械性能的影响,其拉伸应力-应变曲线如图7所示。杂化膜的机械性能主要受到添加剂分子交联和膜的均相性两方面因素的影响。由图7可知,当GO-Ly含量增加时,杂化膜的拉伸强度基本呈增加趋势,但断裂伸长率则出现不规律变化,可能是由于GO-Ly粒径较大,在膜主体中分散不均匀使膜均相性下降所造成的。

《图7》

图7 不同含量的GO-Ly对杂化膜力学性能的影响

Fig. 7 The effect of GO-Ly content on mechanical property of hybrid membrane

3.3.5 抗菌性能

本文通过引入具有抗菌性能的 GO-Ly 制备抗菌杂化膜,GO-Ly的作用是增加膜的抗菌性能。为了考察杂化超滤膜的抗菌性能,选择大肠杆菌做膜的抗菌实验。抗菌效果如图8所示。随着GO-Ly含量的增加,杂化膜的抗菌性能升高。由图8可知,相对空白膜培养皿中大肠杆菌的数量,杂化膜培养皿中大肠杆菌的数量明显减少,说明GO-Ly对大肠杆菌有一定抑制作用,同时也证明了GO-Ly已经被引入膜材料中。相对于空白膜,杂化膜对大肠杆菌的抑菌率为68 %。

《图8》

图8 空白膜及含1.5 % GO-Ly杂化膜对大肠杆菌的抗菌效果

Fig. 8 Antibacterial effect of PES membrane and hybrid membrane with 1.5 % of GO-Ly against E. coli

在常温条件下,杂化膜保存2个月后仍然具有良好的抗菌活性,说明GO-Ly杂化超滤膜具有一定的抗菌持久性。

《4 结语》

4 结语

以 GO 为固定溶菌酶的载体材料,主要通过静电吸附方式使溶菌酶固定在 GO 表面,并通过 GOLy 与 PES 共混制备 GO-Ly/PES 杂化膜。通过对杂化膜进行一系列表征得到以下结论:GO-Ly的加入能较大程度地改善杂化膜的亲水性;另外,随着GOLy含量的增加,杂化膜的纯水通量显著增大,虽然对 PEG 20 000 的截留率降低,但是对 PVA 30 000~ 70 000的截留率仍维持在99 %以上,同时对大肠杆菌的抑菌率可达 68 %,并表现出了一定的抗菌持久性。